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單克隆抗體的純化

    大量生產單克隆抗體的單克方法主要有以下兩種。

單克隆抗體的純化

    1.體外使用旋轉培養管大量培養雜交瘤細胞,隆抗從中獲取單克隆抗體。純化但此方法產量低,單克一般培養液內抗體含量為10—60ug/ml,隆抗如果大量生產,純化費用較高。單克小鼠可獲5一l0ml腹水。隆抗也可用注射器抽提腹水。純化

    2.體內接種雜交瘤細胞,單克制備腹水或血清。隆抗

    (1)實體瘤法:對數生長期的純化雜交瘤細胞按(1—3)×107/ml接種于小鼠背部皮下,每處注射o.2ml,單克共2~4點。隆抗待腫瘤達到一定大小后(一般10~20d)則可采血,純化從血清中獲得單克隆抗體的含量可達到1—10rug/m1。但采血量有限。

    (2)腹水的制備:常規是先腹腔注射0.5ml降植烷或液體石蠟于BALB/C鼠,1—2周后腹腔注射1X106個雜交瘤細胞,接種細胞7~10d后可產生腹水。密切觀察動物的健康狀況與腹水征象,待腹水盡可能多而小鼠瀕于死亡之前處死小鼠,用滴管將腹水吸人試管,一般一只可反復收集數次。腹水中單克隆抗體含量可達到5—10mg/ml,這是目前最常用的方法。還可將腹水中細胞凍存起來,復蘇后轉種小鼠腹腔,則產生腹水快、量多。

    單克隆抗體的純化方法同于多克隆抗體,腹水特異性抗體的濃度較抗血清中的多克隆抗體高,純化效果好。按要求的純度不同采用相應的純化方法。一般采用鹽析、凝膠過濾和離子交換層析等步驟達到純化目的,也有采用較簡單的酸沉淀方法。目前最有效的單克隆抗體純化方法為親和純化法,多用葡萄球菌A蛋白或抗小鼠球蛋白抗體與載體(最常用Sepharose)交聯,制備親和層析柱將抗體結合后洗脫,回收率可達90%以上。蛋白可與IgGl、IgG2a、IgG2b和IgG3結合,同時還結合少量的IgM。洗脫液中的抗體濃度可用紫外光吸收法粗測,小鼠IgG單克隆抗體溶液A280(A)為1.44吸光單位時相當于lmg/ml。經低pH洗脫后在收集管內預置中和液對保持純化抗體的活性至關重要。

 

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